Полезные статьи

Ожирение — одна из самых распространенных проблем у домашних животных. Под ожирением понимают превышение нормы массы тела более чем на 20% от физиологической нормы. Среди домашних животных ожирение регистрируют более чем у 30-40 % собак и кошек. Часто хозяева не задумываются о том, что это может привести к серьёзным проблемам со здоровьем. У собак и кошек с лишним весом идёт сильная нагрузка на опорно-двигательный аппарат: суставы сильно страдают, деформируются. Появляется хромота, животному становится трудно передвигаться. От ожирения страдают и внутренние органы — орган начинает «перерождаться», у животного развивается жировая дистрофия (первой страдает печень). Идёт сильная нагрузка на сердце, развивается атеросклероз. При ожирении выше риск развития сахарного диабета.

Лишний вес у животного легко определить при внешнем осмотре.

Если у животного вес в норме, то рёбра не должны быть видны, но их можно легко прощупать. Талия различима, на животе есть небольшой слой жира.

Вес питомца нужно постоянно держать под контролем. Чтобы взвесить животное, можно взять его на руки и взвеситься вместе с ним на напольных весах. Потом взвеситься без него и вычесть свой вес из результатов взвешивания с животным. Чтобы взвесить собаку крупного размера, надо идти в ветеринарную клинику – там, как правило, есть широкие весы для взвешивания животных.

Причины ожирения

• Переедание
• Малоподвижный образ жизни
• Нарушение обмена веществ
• Гормональные изменения
• Заболевания щитовидной железы
• Психологические факторы (наслаждение вкусом, когда животные не могут насытиться; скука, депрессия; жадность, при совместном кормлении)

Профилактика

Чтобы у животного не было лишнего веса, главное — не перекармливать и давать достаточно физических нагрузок. На промышленных кормах написаны суточные нормы кормления для животных разного размера и веса. Если на этом количестве собака всё равно толстеет, или, наоборот, худеет, то количество можно немного уменьшить или увеличить.

Если же у питомца уже есть проблема ожирения — необходимо обратиться к ветеринарному врачу, чтобы он назначил лечение и специальную диету.

Лечение

Лечение ожирения у животных сложное, занимает несколько месяцев, а иногда и лет. Схему лечения разрабатывают индивидуально. Учитываются следующие направления:

• нормализация баланса поступления и расхода питательных веществ;
• устранение причины ожирения;
• лечение сопутствующих ожирению болезней;
• дальнейший контроль массы тела.

Нормализация баланса поступления и расхода питательных веществ достигается составлением диеты и графика физических нагрузок.

Е.Л. Кемельман (kemelman@yandex.ru), Е.М. Волкова, В.А. Санникова (viktory-tory@mail.ru), Ю.Д. Дюжева, А.В. Клименкова (sashulechek656@mail.ru), Ю.Л. Навнычко (juce2005@mail.ru). Клиника ветеринарной медицины «Айболит» (МО, Красногорск).

В научной статье описана прижизненная диагностика с помощью КТ интракраниальных НО у 9 крыс, приведены клинические данные о переносимости йогексола в различных дозах, эффективности предложенного протокола лечения.

Ключевые слова: аденома, гипофиз, интракраниальная локализация, новообразование, крыса, компьютерная томография

Сокращения: АГ — аденома гипофиза, КТ — компьютерная томография, КВ — контрастное вещество, НО — новообразование/я, ОМЖ — опухоль молочной железы

Введение

Декоративных крыс, наиболее часто используемых как экспериментальных животных [5], все чаще заводят в качестве домашних питомцев. Этому способствует их высокий интеллект и легкость социальной адаптации. Как и прочие домашние животные, крысы нуждаются в достоверной диагностике и обоснованных схемах лечения.

Интракраниальные НО, в частности АГ, представляют собой актуальную проблему, так как часто вызывают неврологический дефицит и являются пролактин продуцирующими, что, как правило, провоцирует формирование ОМЖ за счет избыточной продукции пролактина [8]. Chandra M., et al 1992 [2] указывает, что у самцов линии Спрег-Доули (англ. Sprague Dawley) АГ встречается в 27,4 % случаев, у самок — в 48,6 %. По данным Kaspareit-Rittinghausen J., et al 1990 [3], инцидентность данного типа опухоли еще выше, и самцы к ней более предрасположены: 53 % против 45 % самок с АГ. Таким образом, АГ является наиболее распространенной опухолью у самцов крыс, и второй по инцидентности после ОМЖ у самок.

Несмотря на то, что аденома — преобладающий тип НО гипофиза у крыс, Chandra M., et al 1992 [2] указывает в своем исследовании, что аденокарциномы гипофиза также встречаются, хотя и значительно реже: у 0,45 % самцов и 0,75 % самок. Данные по инцидентности новообразований головного мозга приведены в таблице 1.

На сегодняшний день прижизненная диагностика интракраниальных НО у крыс не описана ни в мировой, ни в отечественной литературе. При этом, есть данные, касающиеся использования КТ для диагностики опухолей гипофиза у МДЖ [1, 4, 6, 7].

Цель исследования

Оценить возможности КТ для прижизненной диагностики интракраниальных НО у крыс, определить оптимальные параметры сканирования и оптимальные дозы йогексола для внутривенного контрастирования, оценить эффективность предложенной схемы консервативного лечения.

Материалы и методы

Для исследования были отобраны 9 крыс, самки, возраст 12…18 месяцев; из них у восьми крыс в анамнезе — ОМЖ, у одной — недифференцированное НО в области нижней челюсти. У трех крыс наблюдался выраженный вестибулярный сидром, пять пациентов поступили в клинику с жалобой от владельцев на общее угнетение (вялость, апатия, отказ от корма), снижение мышечного тонуса и нарушение моторики грудных конечностей; одна крыса была исследована с помощью КТ по поводу НО в области нижней челюсти и не имела ни неврологической симптоматики, ни симптоматики вялости и апатии.

Дополнительно была создана контрольная группа (4 клинически здоровые крысы, самки, без историй болезни), чтобы иметь нормальную картину гипофиза при КТ-диагностике с КВ и без него.

Для исследования использовали компьютерный томограф «Picker PQ 6000», спиральное сканирование, толщина среза 1,5 мм, 120 kV, 150 mAs.

Всем крысам выполняли два КТ исследования поочередно: без КВ и с внутривенным контрастированием по вышеуказанному протоколу. В качестве контрастного агента был выбран йогексол (омнипак, omnipaque, «Амершам Хелс», Корк, Ирландия). Йогексол в концентрации 350 мг/мл использовали в дозе 700 мг/кг у 2 крыс и 1050 мг/кг у 2 крыс.

Для анестезиологического пособия использовали изофлюран в монорежиме.

Основной проекцией исследования была аксиальная (серия поперечных «срезов», рис. 1 а), но в качестве дополнительной также использовали сагиттальную проекцию (рис. 1 б).

Рис. 1. Интракраниальное НО (предположительно, АГ). Внутривенное контрастирование: а — йогексол 700 мг/кг, аксиальная проекция;б — йогексол 1050 мг/кг, средняя сагиттальная проекция

Протокол лечения был построен следующим образом. Крысам (n=8) с диагнозом интракраниальная неоплазия была назначена следующая схема лечения: маннит 1 г/кг 2 раза в сутки в течение 4 дней; каберголин 62,5…125 мкг на крысу, 2 раза в сутки, орально, пожизненно; пролигестон 30…40 мг на крысу, 1 раз в 7…14 дней в зависимости от клинической картины; преднизолон 1 мг/кг, 2 раза в сутки в течение 14 дней, далее 1 мг/кг, 1 раз в сутки, в течение 7 дней, далее 1 раз в 2 суток, в течение 7 дней, далее 1 раз в 3 суток в течение 7 дней. Одной крысе лечение не назначали за отсутствием необходимости.

Результаты

Все 13 крыс хорошо перенесли внутривенное введение йогексола, как в дозе 700 мг/кг, так и в дозе 1050 мг/кг. У первых двух крыс из контрольной группы наблюдали незначительный тремор сразу после введения КВ. Было установлено, что данная реакция — следствие комнатной температуры вводимого препарата. Остальным 11 крысам (2 из контрольной группы и 9 из группы исследования) вводили подогретый йогексол, и подобной реакции не отмечали. Изображения, полученные от крыс из контрольной группы, использовали как эталон.

Денситометрические показатели ткани головного мозга и НО приведены в таблицах 2 (контрольная группа) и 3 (группа исследования).

В контрольной группе головной мозг как до, так и после введения КВ, визуализировался в форме однородной мягкотканой массы, выраженного накопления КВ не происходило. Аналогичным образом вела себя и ткань здорового гипофиза. В группе исследования до введения КВ ни у одной из 9 крыс интракраниальное НО не визуализировалось. После введения КВ все НО визуализировались хорошо, отмечено значительное накопление КВ. Изображения до и после введения КВ приведены на рисунках 2 и 3. Авторы не выявили существенных преимуществ дозировки йогексола 1050 мг/кг перед дозировкой 700 мг/кг для визуализации интракраниальных неоплазий. Результаты денситометрии контрольной группы и группы исследования приведены в таблицах 4 и 5, соответственно.

Рис. 2. Визуализация интракраниального НО (предположительно АГ) до контрастирования (КТ) и с внутривенным контрастированием йогексолом в дозе 700 мг/кг (КТ + КВ)

Рис. 3. Визуализация интракраниального НО до контрастирования (КТ) и с внутривенным контрастированием йогексолом в дозе 1050 мг/кг (КТ + КВ)

8 из 9 крыс в группе исследования продемонстрировали выраженный положительный ответ на терапию. У трех крыс выраженную положительную динамику наблюдали на второй день лечения, у 5 крыс — на четвертый день, у одной крысы изначально не отмечены ни неврологический дефицит, ни ухудшение общего состояния, а обнаруженная опухоль была случайной находкой. Крысы с симптоматикой общего угнетения активнее общались с людьми и сородичами, принимали корм. Крысы с вестибулярным синдромом уже в первые сутки лечения имели менее выраженный наклон головы, начинали лучше ориентироваться в пространстве и становились более активными. На момент написания работы (16.02.2016) 7 крыс живы, в течение последних 5 месяцев рецидивы симптоматики наблюдали у двух крыс. Одна крыса погибла спустя 3 месяца, было выполнено патологическое исследование (рис. 4), гистологический диагноз — АГ. Вторая крыса, со слов владельца, погибла, материал для патологического исследования не был предоставлен.

Рис. 4. Макропрепарат. Аденома гипофиза

Обсуждение

Интракраниальные опухоли у крыс часто встречаются, однако точная статистика пока отсутствует, так как подтверждение подобного диагноза невозможно без КТ. Последняя показала себя как точный и удобный метод диагностики интракраниальных НО у крыс. Одно из самых важных преимуществ КТ (наряду с высокой точностью) — очень высокая скорость исследования, составляющая не более 30 с, что зависит от технических характеристик томографа.

Визуальное подтверждение диагноза значительно повышает уверенность лечащего врача и лояльность владельца животного, способствует принятию решения в пользу лечения, а не эвтаназии.

Несмотря на то, что было получено лишь одно гистологическое подтверждение диагноза, авторы полагают, что 7 из 9 НО являлись АГ или аденокарциномами гипофиза. Данное предположение связано с типичной локализацией неоплазий, а также визуальной идентичностью аналогичных НО у собак и кошек с подтвержденными диагнозами АГ. Два других НО (см. рис. 3, рис. 5) имели не типичную для АГ локализацию и не были дифференцированы с помощью цитологического или гистологического исследований. НО, изображенное на рисунке 5, продемонстрировало очень выраженное накопление КВ, имело небольшие, относительно головного мозга, размеры, и выраженную локализацию под сводом черепа. Подобная визуальная картина может быть характерна для менингиомы, однако эта версия остается лишь предположением авторов.

Рис. 5. Локализация НО непосредственно под сводом черепа

Заключение

Предложенная авторами схема лечения привела к значительному улучшению качества жизни крыс с интракраниальными НО. Недостатком метода можно назвать лишь высокие трудозатраты, связанные с необходимостью внутривенной катетеризации и дачей анестезиологического пособия, но, по мнению авторов, эти недостатки не являются существенными, особенно в виду отсутствия альтернатив.

Исследовав отечественные и зарубежные периодические издания, авторы не нашли никаких упоминаний о похожих исследованиях. На этом основании мы полагаем, что это первый опыт подобных исследований у крыс.

Библиография

1. Auriemma, E. Computed tomography and low-field magnetic resonance imaging of the pituitary gland in dogs with pituitary-dependent hyperadrenocorticism: 11 cases (2001–2003) / E. Auriemma, P.Y. Barthez, R.H. van der Vlugt-Meijer, Voorhout, B.P. Meij // J Am Vet Med Assoc. —2009. — No. 235. — P. 409–414.
2. Chandra, M. Spontaneous neoplasms in aged sprague-dawley rats / M. Chandra, M.G. Riley, D.E. Johnson // Arch Toxicol. — 1992. — No. 66. — P. 496–502.
3. Kaspareit-Rittinghausen, J. Mortality and tumor incidence of Han: SPRD rats / J. Kaspareit-Rittinghausen, F. Deerberg, K. Rapp, A. Wcislo // Z Versuchstierkd. — 1990. — No. 33. — P. 23–28.
4. Pollard, R.E. Cross-sectional imaging characteristics of pituitary adenomas, invasive adenomas and adenocarcinomas in dogs: 33 cases (1988–2006) / R.E. Pollard, C.M. Reilly, M.R. Uerling, F.D. Wood, E.C. Feldman // J Vet Intern Med. — 2010. — No. 24. — P. 160–165.
5. Stormshak, F. Stimulatory and inhibitory effects of estrogen on uterine DNA synthesis / F. Stormshak, R. Leake, N. Wertz, J. Gorski //Endocrinology. — 1976. — No. 99. — P. 1501–1511.
6. Van der Vlugt-Meijer, R.H., Voorhout G., Meij B. P. Imaging of the pituitary gland in dogs with pituitary-dependent hyperadrenocorticism. Molecular and Cellular Endocrinology. — 2002. — No. 197. — P. 81–87
7. Van der Vlugt-Meijer, R.H. Dynamic computed tomography of the pituitary gland in dogs with pituitary-dependent hyperadrenocorticism / R.H. van der Vlugt-Meijer, B.P. Meij, T.S. van den Ingh, A. Rijnberk, G. Voorhout // J Vet Intern Med. — 2003. — No. 17. — P. 773–780.
8. Wendell, D.L. Quantitative trait loci for estrogen-dependent pituitary tumor growth in the rat / Wendell D.L., Gorski J. // Mammalian Genome. — 1997. —No. 8. — P. 823–829.

Кастрация – хирургическая операция по удалению репродуктивных органов. В ходе этой операции у самцов удаляются семенники (яички) с придатками, у самок удаляются яичники (неполная кастрация) или яичники и матка (стерилизация).
Многие знают, что при помощи кастрации можно избежать таких неприятностей как пахучие метки, которые оставляют коты в самых разных местах, нежелательное потомство и сложности, связанные с поведением животных в период половой охоты, например, агрессия.
Но далеко не всем известно, что кастрация вместе с тем позволяет предотвратить развитие многих заболеваний, которые могут появиться с возрастом. А именно: простатита, аденомы и рака простаты, опухолей семенников различного генеза у котов, эндометрита, пиометры, поликистоза эндометрия и яичников, доброкачественных и злокачественных новообразований матки, яичников и молочных желёз у кошек и сук.
Нельзя сказать, что эта операция является лишь профилактической. Довольно часто она имеет прямые медицинские показания, чаще всего при уже развившихся вышеперечисленных заболеваниях или высоком риске их развития, например, при крипторхизме у самцов. Но следует понимать, что в этом случае сложность и стоимость операции значительно возрастают, и, к сожалению, уже не всегда от операции возможно получить желаемый эффект.
Кроме всего прочего, при отсутствии половой охоты животному нет нужды стремиться искать себе пару, а следовательно, убегать от владельца в поисках приключений, подвергая свою жизнь и здоровье опасности, что положительно сказывается на качестве, а соответственно, на продолжительности жизни.
Итак, если ваш любимец не участвует в разведении, то разумнее было бы прибегнуть к кастрации.
В каком же возрасте можно и лучше всего кастрировать животных? При необходимости кастрировать можно в любом. Но, если подходить к делу со всей ответственностью, то для котов оптимальный возраст для этого наступает по достижении восьми месяцев, для кошек после полугода. Для кобелей мелких пород, как и для котов, оптимальный возраст после восьми месяцев, крупных и гигантских пород от года до полутора лет. Суку же лучше всего кастрировать до первой течки, а если этого сделать не удалось, по её окончании. В любом случае, перед проведением этой операции необходимо проконсультироваться с ветеринарным врачом, который учтёт все видовые, породные, половые и возрастные особенности и подскажет оптимальный вариант.
Но есть некоторые моменты, которые крайне желательно соблюдать независимо от вида, пола, породы и даже возраста. На момент операции животное должно быть вакцинировано и клинически здорово, если, конечно, операция не была назначена по медицинским показаниям. Соблюдение этих условий поможет в значительной степени снизить риски, сопряжённые с хирургическим вмешательством.
Берегите себя и ваших любимцев! Будьте здоровы!

Мы уже привыкли, что крупные собаки идут к доктору на поводке и в наморднике. Мелкие собачки и кошки едут в специальных переносках. А вот крысы и иже с ними?

Для транспортировки мелких  звериков, таких как крысы, хомяки, мышки, необходимо использовать переноски. В переноске зверик защищен от воздействия окружающей среды, у него есть что перекусить и он чувствует себя защищенным.

Переноски бывают разными, но главное требование – прочность и достаточный размер. У животного должна быть возможность свободно лечь на дне и вытянуться во всю длину тельца. Переноска должна быть легкая, хорошо вентилируемая и достаточно прочная, чтобы в процессе поездки зверик не сбежал «погулять». Удобно поместить ее в сумку – специальную или обычную спортивную, можно даже использовать сумку типа «радость челнока» или любую другую – достаточно объемную и плотную.
Если вы едете в холодное время года, переноску нужно обернуть теплой тканью типа флисового пледа и прихватить с собой соляную грелку или даже обычную пластиковую бутылку с горячей водой. Важно понимать, что звери гораздо хуже переносят жару, чем холод, и в транспорте необходимо ОБЯЗАТЕЛЬНО приоткрывать сумку – чтобы обеспечить доступ воздуха.

В теплое время года сумка может быть из лёгкой ткани, чтобы обеспечить тень и предохранить от ветра.

Чтобы зверику было комфортно ехать, надо обеспечить ему условия «как дома». Для мышки или хомяка – достаточное количество наполнителя на дне, чтобы можно было закопаться или «родной» домик, немного сухого корма. Поилку в дорогу вешать не надо, положите кусочек яблочка или морковки, а попить из поилки дадите в клинике. Для крысок в переноску можно положить и салфетки, но удобнее насыпать наполнитель, так как часто в стрессовой ситуации у них происходит разжижение кала, и если крыска едет на ткани или пеленке – она, пока доедет до врача, вся испачкается в испражнениях. Конечно, вытереть не трудно, но приятно ли животному лежать в какашках, а вам доставать такую «душистую» крыску?

Эти рекомендации касаются животных без внешних повреждений кожного покрова. Если у вашего любимца открытая рана, наполнитель не рекомендуется, и лучшее решение – положить на дно переноски одноразовую пеленку. А сверху – небольшую тряпочку или несколько салфеток – спрятаться от окружающего мира.

Здоровья вам и вашим питомцам!